人外周血白细胞分离液实验方法WBC1077k
 
(细胞培养及分子生物学)
 
【产品规格】
 
200ml/Kit
 
【产品组成】
 
为方便广大用户使用,试剂内容如下:
 
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  | 名称  | 产品编号  | 
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  | A  | 人外周血白细胞分离液  | 
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  | 200ml  | 
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  | B  | 样本稀释液(赠品)  | 2010C1119  | 
  | 200ml  | 
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  | C  | 清洗液(赠品)  | 
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  | 2010X1118  | 
  | 200ml  | 
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  | D  | 红细胞裂解液(赠品)  | NH4CL2009  | 
  | 100ml  | 
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  | E  | 说明书  | 
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  | 1 份  | 
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【实验前准备】  | 
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A. 适用仪器  | 
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  | zui大离心力可达 1200g 的水平转子离心机  | 
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B. 耗材  | 
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  | 产品名称  | 
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  | 15ml 离心管散装  | 
  | 339650  | 
  | 美国 NUNC  | 
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  | 15ml 离心管架装  | 
  | 339651  | 
  | 美国 NUNC  | 
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  | 50ml 离心管散装  | 
  | 339652  | 
  | 美国 NUNC  | 
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  | 50ml 离心管架装  | 
  | 339653  | 
  | 美国 NUNC  | 
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  | 无菌胶头滴管或塑料滴管  | 
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【检验方法】  | 
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全过程样本、试剂及实验环境均需在 20±2℃的条件下进行。
 
首先取抗凝血,根据样本量大小,分以下两种情况:
 
情况 A:血液样本量小于 5ml 时,实验方法如下:
 
1.       取一支 15ml 离心管,先加入 5ml 分离液
 
2.       用吸管小心吸取血液样本加于分离液液面上,400-500g,离心 20-30min(注:如改
变血液样本及分离液用量,需相应调整离心力及离心时间,具体离心条件需客户自行摸
 
索,以达到分离效果。)
 
3.       离心后用吸管小心吸取所有环状乳白色细胞层(一层或两层),加入 10 ml 清洗液(产 品编号:2010X1118),混匀细胞。250g,离心 10min。重复洗涤 2-3 次,即得所需白细 胞。
 
4.       如有红细胞残留请使用红细胞裂解液(产品编号:NH4CL2009)裂解红细胞,具体操
 
作方法详见“红细胞裂解液使用说明”。
 
情况 B:血液样本量大于等于 5ml 时,实验方法如下:
 
1.       取一支适当的离心管,先加入与样本等量的分离液。
 
2.       将血液样本小心加于分离液之液面上,450-650g(zui大离心力可至 1000g),离心 20-30min。(注:根据血液样本量确定离心条件,血液量越多,离心力越大,离心 时间越长,具体离心条件需客户自行摸索,以达到分离效果。加入血液样本后,样 本及分离液总体积不得超过离心管总体积的三分之二)。
 
3.       剩余步骤同“情况 A”中步骤 3 与步骤 4。
 
【注意事项】
 
1.    全过程样本、试剂及实验环境均需在 20±2℃的条件下进行。为获得的实验结果,zui 好在取血 2h 内进行实验,血液存放时间越长,细胞分离效果越差。血液放置超过 6h 后 分离效果更差甚至不能达到分离目的。
 
2.    本实验不要使用高聚合材质(如聚苯乙烯)的塑料制品,应使用无静电、低静电离 心管及未经碱处理过后的玻璃制品,因为静电作用将导致细胞贴壁、碱处理的玻璃表面 会变成毛面,影响细胞分离效果。
 
3.    分离液用量大于稀释后血液样本时,分离效果更佳。
 
4.    当血液样本粘度过高需稀释时,*稀释方法:将血液与样本稀释液(产品编号: 2010C1119)1:1 稀释混匀备用。注:不当的稀释方法会降低细胞得率及活性。如血液样 本经过稀释则分离过程中需适当降低离心力和离心时间。
 
5.    如实验后细胞得率或活性过低,请以寻求帮助,具体详 见下方生产企业信息。
 
【储存条件及有效期】
 
18-25℃保存,有效期 2 年。本品易感染细菌,需无菌条件操作。无菌条件下操作,启
 
封后置常温保存。如 4℃保存,本分离液易出现白色结晶,影响分离效果。
 
【参考值(参考范围)】
 
本实验白细胞提取率及纯度大于 80%。
 
下表为成年人外周血中各种细胞的数量及比例,用户可适当进行参考。
 
  | 红细胞  | 
  | 白细胞  | 
  | 血小板  | 
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  | (4.0-10.0)×109  | 
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含量(个/L)  | (4.0-5.5)×1012  | 中性粒细胞  | 淋巴细胞  | 单核细胞  | (1.0-3.0)×1011  | 
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  | 50%-70%  | 20%-40%  | 3%-8%  | 
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【相关实验技术方案】
 
1.       所获得白细胞的培养技术。
 
2.       所获得白细胞的核酸提取技术。
 
3.       所获得白细胞的鉴定方法 A.流式细胞技术 B.免疫组化技术 C.原位杂交技术
 
D.PCR 技术
 
注:上述技术方案详情请登陆本搜索“细胞分离、
 
纯化、扩增、鉴定及生物治疗技术手册”,并在说明书项目栏下下载使用。
 
【可能存在的问题及解决方法】
 
1.    由于血液粘度、细胞密度等差异可能造成的问题及解决方案如下表所示:
 
出现情况  | 出现原因  | 建议解决方案  | 
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离心后目的细胞存在于血浆层或稀释液层  | 转速过小或离心时间过短  | 适当增减转速  | 
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离心后目的细胞存在于分离液中  | 转速过大或离心时间过长  | 
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离心后白环层弥散  | 细胞密度过大  | 调整细胞密度  | 
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离心后白环层太浅或看不见  | 细胞密度过小  | 
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2.       本分离液分离细胞的原理为密度梯度离心,其密度与温度、大气压等密切相关。不同地 区客户可根据当地情况对离心条件进行适当调整。建议对离心条件进行调整时,恒定离 心时间,对离心转速进行调整。
 
3.       本分离液依照标准,全部使用药用级原料,性能指标与国产同类产品略有不同,可 能出现红细胞沉降不*的情况,可以适当加大离心转速。
 
注:在对离心条件进行调整时,离心转速的加减以 50-100g 为基数,直至达到分离效果,
离心力zui小不得小于 400g,zui大不得大于 1200g。离心时间以 20-30min 为准。
